ปิด Btn

เลือกไซต์ภูมิภาคของคุณ

ปิดหน้านี้

การสังเกตตัวอย่างทางชีวภาพโดย JEM-1400Flash ー การไหลจากการเตรียมตัวอย่างไปจนถึงการสังเกต ー

EM2021-01

บทนำ

การใช้กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนช่วยให้สามารถสังเกตโครงสร้างจุลภาคในเซลล์ซึ่งไม่สามารถทำได้ด้วยกล้องจุลทรรศน์แบบใช้แสง เพื่อให้เข้าใจโครงสร้างโดยละเอียดของออร์แกเนลล์ เช่น ไมโทคอนเดรียและคลอโรพลาสต์ กล้องจุลทรรศน์อิเล็กตรอนเป็นเครื่องมือที่ทรงพลัง อย่างไรก็ตาม ด้วย TEM การสังเกตของชิ้นงานทดสอบในสภาพมีชีวิตเป็นไปไม่ได้เนื่องจากการสังเกตจะดำเนินการในสุญญากาศ นอกจากนี้ ในการที่จะส่งลำอิเล็กตรอนได้ ชิ้นงานจะต้องถูกหั่นเป็นชิ้นบางๆ
เพื่อจุดประสงค์นี้ การเตรียมชิ้นงานทดสอบเป็นขั้นตอนที่สำคัญมากในการจับโครงสร้างของชิ้นงานโดยไม่มีสิ่งปลอมปน บันทึกการใช้งานนี้อธิบายการไหลของการเตรียมตัวอย่างสำหรับตัวอย่างทางชีวภาพ โดยใช้ตัวอย่างเนื้อเยื่อพืชเพื่อแนะนำข้อมูลที่ได้รับจาก JEM-1400Flash

การไหลของการเตรียมตัวอย่าง

มีหลายวิธีในการเตรียมตัวอย่างทางชีวภาพ ตัวอย่างเช่น เราได้แนะนำการตรึงชิ้นงานทดสอบโดยใช้วิธีการตรึงทางเคมีและวิธีการตัดเฉือนแบบบางเฉียบโดยใช้อุลตร้าไมโครโครโตม ขั้นตอนการเตรียมชิ้นงานทดสอบเป็นไปตามลำดับดังนี้ 1. การตัดชิ้นงานทดสอบ 2. การตรึง 3. การคายน้ำ 4. การทดแทน 5. การฝัง 6. การโพลิเมอไรเซชัน 7. การตัดแต่ง 8. การแบ่งส่วนแบบบางเฉียบ 9. การย้อมสี แต่ละขั้นตอนมีการอธิบายไว้ด้านล่าง

1. การตัดตัวอย่าง


ชิ้นงานทดสอบถูกตัดเป็นชิ้นเล็กๆ โดยใช้ใบมีดโกน เพื่อให้สารเคมีที่ใช้ในกระบวนการผลิตต่อไปซึมผ่านได้ง่าย

2. การตรึง


กระบวนการหยุดการเปลี่ยนแปลงโครงสร้างของตัวอย่างทางชีวภาพด้วยสิ่งประดิษฐ์เพียงไม่กี่ชิ้น สำหรับการตรึงด้วยสารเคมี การตรึงจะดำเนินการสองครั้ง: การตรึงล่วงหน้าและการตรึงภายหลัง คำนำหน้าใช้เพื่อตรึงโปรตีน และใช้หลังการตรึงเพื่อแก้ไขไขมัน
หมายเหตุ: Osmium tetroxide มีความผันผวนและมีปฏิกิริยาสูง และสามารถทำลายระบบทางเดินหายใจ ผิวหนัง และเยื่อเมือกของผู้ใช้ได้ ดังนั้น กระบวนการนี้ควรทำในอาหารที่มีควัน

รีเอเจนต์

  • สารละลายนำหน้า:กลูตาราลดีไฮด์ 2.5 % และพาราฟอร์มัลดีไฮด์ 2% ใน 0.1 M HEPES*¹ (ครึ่งคาร์นอฟสกี)
  • สารละลายหลังการตรึง:สารละลายออสเมียมเตตรอกไซด์ 1 % (OsO4 ใน 0.1 M HEPES)
  • น้ำยาล้าง:0.1 M HEPES หรือน้ำกลั่น
  • ขวดตัวอย่าง

*1 HEPES: ตัวย่อของสารละลายบัฟเฟอร์ 2- [4- (2-Hydroxyethyl) -1-piperazinyl] ethanesulfonic acid

3. การคายน้ำ


ใช้เอทานอลหรืออะซิโตนเพื่อทำให้ปริมาณน้ำในเซลล์ขาดน้ำ หากความชื้นยังคงอยู่ ปริมาณน้ำที่เหลืออยู่จะป้องกันไม่ให้เกิดพอลิเมอไรเซชันของเรซินในระหว่างการฝังเรซินในภายหลัง ปฏิบัติตามกระแสด้านล่างเพื่อแช่ตัวอย่างในความเข้มข้นของเอทานอลแต่ละชนิดเพื่อทดแทนปริมาณน้ำด้วยเอทานอล

การคายน้ำ

4. การทดแทน


เมื่อถูกทำให้แห้งด้วยเอทานอล จะถูกแทนที่ด้วยโพรพิลีนออกไซด์ (PO) หรือคล้ายกันในฐานะสารตัวกลางเพื่อผสมกับอีพอกซีเรซิน

รีเอเจนต์

  • PO
  • อีพอกซีเรซิน
    ※ EPON 812 . ของ TAAB*2 ถูกนำมาใช้
  • PO เท่านั้น 2x5 นาที
  • PO:เรซิ่น=2:1 2 ชั่วโมง
  • PO:เรซิ่น=1:1 2 ชั่วโมง
  • PO:เรซิ่น=1:2 2 ชั่วโมง
  • เรซิ่นเพียง 18 ถึง 24 ชั่วโมง

- การปรับเรซิน -

  • วัด EPON 812*2, ดีดีเอสเอ*3, สพม*4 ตามสัดส่วนที่แสดงในตารางแล้วใส่ลงในบีกเกอร์
  • คนให้เข้ากันโดยใช้เครื่องกวน
  • เพิ่ม DMP-30*5 และกวน
  • ขจัดแก๊สเรซินและขจัดฟองอากาศ

ตาราง: การผสมอีพอกซีเรซิน 

(%) อ่อนนุ่ม กลาง ยาก
EPON812 48 48 48
ดีดีเอสเอ 30 19 12
MNA 20 33 40
ดีเอ็มพี-30 2 2 2

ข้อมูลอ้างอิง:เอกสารข้อมูลของ TAAB 12a 

*2 EPON 812:เรซิน, *3 ดีดีเอสเอ・*4 MNA: ตัวชุบแข็ง, *5 DMP-30:สารเร่งความเร็ว

5. การฝัง


เพื่อเตรียมชิ้นส่วนที่บางเป็นพิเศษ จำเป็นต้องฝังชิ้นงานทดสอบในสารฝังแข็ง เช่น เรซิน
เรซินเหลวจะบ่มในระหว่างกระบวนการโพลิเมอไรเซชันในภายหลัง

เครื่องมือ

  • อีพอกซีเรซิน
  • แผ่นฝังซิลิโคน (รูปที่ 1)
  • เทเรซิน
  • วางชิ้นงานทดสอบไว้ที่ปลายแผ่นซิลิโคนฝังตัว
  • ปล่อยให้นั่งสักครู่เพื่อผสมผสาน
แผ่นฝังซิลิโคน

รูปที่ 1 แผ่นฝังซิลิโคน

6. พอลิเมอไรเซชัน


อุ่นเรซินเพื่อรักษา เพื่อให้สามารถหั่นเรซินบางๆ ได้ วางแผ่นซิลิโคนฝังลงในเตาอบและเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 60°C เป็นเวลาสามวัน การทำให้อุณหภูมิคงที่ในระหว่างการทำโพลิเมอไรเซชันสามารถป้องกันความล้มเหลวของโพลิเมอไรเซชันของเรซินได้

เครื่องมือ

  • เตาอบสำหรับเรซินพอลิเมอไรเซชัน

7. การตัดแต่ง


ตัดชิ้นงานทดสอบภายใต้กล้องจุลทรรศน์แบบออปติคัลเพื่อให้พื้นที่ที่จะสังเกตมีขนาดที่จะวางบนกริดของชิ้นงานทดสอบและกำหนดรูปร่างของพื้นผิวที่จะสังเกต

เครื่องมือ

  • ใบมีดโกน
  • กล้องจุลทรรศน์ออปติคอล
การพ่ายแพ้

8. การแบ่งส่วนบางเฉียบ


นำเรซินออกเพื่อให้เห็นพื้นผิวของเนื้อเยื่อโดยใช้มีดแก้ว จากนั้นหั่นเป็นชิ้นบางพอที่จะส่งลำแสงอิเล็กตรอนด้วยมีดเพชรและ ultramicrotome แล้ววางบนตะแกรง

เครื่องมือ

  • อัลตร้าไมโครโตม
  • ตะแกรง
  • มีดเพชร
  • มีดแก้ว
  • โพรบขนตา(รูปที่. 2)
โพรบขนตา

รูปที่ 2 โพรบขนตา

超薄切ロ作製

9. การย้อมสี


การดำเนินการนี้ใช้เพื่อเพิ่มความคมชัดของตัวอย่างทางชีวภาพซึ่งมีธาตุแสงจำนวนมาก ความคมชัดของการกระเจิงเพิ่มขึ้นโดยการผูกองค์ประกอบหนักเข้ากับชิ้นงานทดสอบ เมื่อทำการย้อมส่วนที่บางเฉียบบนตะแกรง การย้อมสีสองครั้งจะดำเนินการโดยใช้ยูแรนิลอะซิเตตและตะกั่วซิเตรตเป็นสารย้อมสี Uranyl acetate คราบนิวคลีโอพลาสซึมและไรโบโซม ในขณะที่ตะกั่วซิเตรตเปื้อนเยื่อหุ้มเซลล์ เม็ดไกลโคเจน และไรโบโซม

รีเอเจนต์

  • ยูเรนิลอะซิเตท*6
  • ตะกั่วซิเตรต

*6 Uranyl acetate เป็นสารประกอบซึ่งเป็นสารควบคุมระดับสากลที่สามารถใช้ได้ในโรงงานที่ได้รับอนุญาตเท่านั้น
สารละลายทางเลือกสำหรับยูแรนิลอะซิเตต ได้แก่ อิตเทอร์เบียมอะซิเตท

ผล

รูปที่ 3 แสดงผลการสังเกตชิ้นงานแบบบางเฉียบที่เตรียมโดยปฏิบัติตามขั้นตอนข้างต้น โดยใช้ TEM (JEM-1400Flash)

ผล

รูปที่ 3 ภาพ TEM ของใบเมเปิ้ล
สามารถจับโครงสร้างเมมเบรนของออร์แกเนลล์ได้อย่างชัดเจน
ในภาพด้านซ้ายของรูปที่ 3 อุปกรณ์ Golgi สามารถมองเห็นได้ตรงกลางและคลอโรพลาสต์ทั้งสองด้าน
ภาพด้านขวาแสดงโครงสร้างของเยื่อหุ้มไมโตคอนเดรีย

JEM-1400แฟลช
โปรดดูไฟล์ PDF สำหรับข้อมูลเพิ่มเติม
หน้าต่างอื่นจะเปิดขึ้นเมื่อคุณคลิก

PDF1.2MB
ปิดหน้านี้
แจ้งให้ทราบ

คุณเป็นผู้เชี่ยวชาญทางการแพทย์หรือบุคลากรที่เกี่ยวข้องกับการรักษาพยาบาลหรือไม่?

ไม่

โปรดทราบว่าหน้าเหล่านี้ไม่ได้มีวัตถุประสงค์เพื่อให้ข้อมูลเกี่ยวกับผลิตภัณฑ์แก่ประชาชนทั่วไป

พื้นฐานวิทยาศาสตร์

คำอธิบายง่ายๆ เกี่ยวกับกลไกและ
การใช้งานผลิตภัณฑ์ JEOL

ติดต่อ

เจอีโอแอล ให้บริการสนับสนุนที่หลากหลายเพื่อให้แน่ใจว่าลูกค้าของเราสามารถใช้ผลิตภัณฑ์ของเราได้อย่างสบายใจ
โปรดติดต่อเรา